
تعداد نشریات | 31 |
تعداد شمارهها | 1,030 |
تعداد مقالات | 9,097 |
تعداد مشاهده مقاله | 10,334,331 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 8,568,871 |
بررسی واکنش تعدادی از گیاهان زینتی در برابر نماتد Meloidogyne javanica و ارزیابی اثر همافزایی Neocosmospora solani با نماتد در گیاه فروکاکتوس | ||
گیاه پزشکی | ||
دوره 46، شماره 4، اسفند 1402، صفحه 71-89 اصل مقاله (1.42 M) | ||
نوع مقاله: علمی پژوهشی-فارسی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22055/ppr.2024.44898.1710 | ||
نویسندگان | ||
امین مقصودی1؛ مهدی داوری* 2؛ شلاله مصلحی3 | ||
1دانشجوی کارشناسی ارشد بیماریشناسی گیاهی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران | ||
2دانشیار، گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران | ||
3استادیار، گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شهید مدنی آذربایجان، تبریز، ایران | ||
چکیده | ||
با توجه به اهمیت تولید گیاهان زینتی و خسارت نماتد مولّد ریشهگرهی و قارچ عامل پوسیدگی ریشه در این گیاهان، مطالعه حاضر با هدف ارزیابی واکنش نه گیاه زینتی به نماتد Meloidogyne javanica و اثر همافزایی Neocosmospora solani با نماتد بر روی گیاه زینتی فروکاکتوس انجام گرفت. برای این منظور، سوسپانسیون تخم و لارو M. javanica به عنوان مایهتلقیح نماتد روی گیاهان زینتی مورد استفاده قرار گرفت و برخی فاکتورهای رشدی گیاهان و تعداد گره در ریشه مورد بررسی قرار گرفت. همافزایی دو بیمارگر قارچ و نماتد نیز روی برخی فاکتورهای رشدی فروکاکتوس با دو روش مایهزنی همزمان و غیرهمزمان ارزیابی شد. در گیاه میرتلو (پایه آبی) گره قابل ثبتی وجود نداشت. بر اساس مقایسات انجام یافته بین گیاهان مایهزنی شده با نماتد، بیشترین تعداد گره در ریشه مربوط به بگونیا و کمترین در اشوریا، فروکاکتوس و آلوئه ببری مشاهده شد. فاکتورهای رشدی مورد بررسی و شکل ظاهری نیز در اغلب گیاهان با آلودگی بالا تحت تأثیر قرار گرفته بود که بیشترین تاثیر در بگونیا مشاهده شد. در ارزیابی همافزایی، نتایج هر دو روش نشان داد که تیمار فروکاکتوس شاهد و تیمار دارای نماتد، بالاترین طول اندام هوایی را داشتند و کمترین طول اندام هوایی نیز متعلّق به تیمار مایهزنی شده با نماتد و قارچ بود. همچنین گیاهان شاهدِ بدون قارچ و نماتد، بالاترین و تیمار مایهزنی شده با نماتد و قارچ، کمترین طول و وزن ریشه را داشتند. بهطور کلی، نتایج این پژوهش، قابلیت بالای نماتدهای مولّد ریشهگرهی در ایجاد خسارت بر روی گیاهان زینتی را نشان داد. از طرفی، اثرات همافزایی M. javanica و N. solani در افزایش خسارت روی فروکاکتوس نیز مورد تایید قرار گرفت. نتایج حاصل، ضرورت شناسایی و کنترل این بیمارگرها را در گلخانههای تولید گیاهان زینتی مشخص مینماید. | ||
کلیدواژهها | ||
پوسیدگی ریشه؛ گیاهان زینتی؛ نماتد مولّد ریشهگرهی؛ همافزایی؛ Ferocactus horridus | ||
مراجع | ||
Atkinson, G. F. (1892). Some diseases of cotton. Alabama Agricultural Experiment Station Bulletin, 41, 61–65. Banihashemi, Z., & Dezeeuw, D. J. (2010). Saprophytic activities of Fusarium oxysporum f. sp. melonis in soil. Transactions of the British Mycological Society, 60, 205–210. Carrillo-Reyes, P, Sosa, V., & Mort, M. E. 2009. Molecular phylogeny of the Acre clade (Crassulaceae): Dealing with the lack of definitions for Echeveria and Sedum, Molecular Phylogenetics and Evolution, 53(1), 267–276. Crous P. W., Sandoval-Denis, M., Costa, M. M., Groenewald, J. Z., van Iperen, A. L., et al. (2022). Fusarium and allied fusarioid taxa (FUSA). 1. Fungal Systematics and Evolution, 9, 161–200. Davari, M., Wei, S. H., Babai-Ahari, A., Arzanlou, M., Waalwijk, C., et al. (2013). Geographic differences in trichothecene chemotypes of Fusarium graminearum in the Northwest and North of Iran. World Mycotoxin Journal, 6(2), 137–150. Eskandarzadeh Khiyavi, N., Moslehi, S. & Vaez, N. (2021). Inhibitory effects of aquatic extracts of Datura stramonium, D. metel and Hyoscyamus niger on Meloidogyne javanica. Plant Pathology Science, 10(1), 27–41. Faraji M., Kheiri A., Okhowat, S. M., & Niknam G. H. (2007). Interaction between artificial inoculation of Meloidogyne javanica and Fusarium oxysporum on two bean cultivars; under greenhouse conditions. Iranian Journal of Agriculture Science, 38(1), 145–152. (In Farsi with English summary). Ghaderi R., & Karssen, G. (2020). An updated checklist of Meloidogyne Göldi, 1887 species, with a diagnostic compendium for second -stage juveniles and males. Journal of Crop Protection, 9(2), 183–193. Gimenes, R., Batista, G. S., Pivetta, K. F. L., Santos, J. M., Soares, P. L. M., & Martins, T. A. (2010). Occurrence of plant-parasitic nematodes in ornamental and flowering plants at Unesp/Fcav, Campus of Jaboticabal, Sao Paulo State, Brazil. Acta Horticulture, 881, 607–610. Haghighi, H., Taheri, A., Razavi, A., Tanha Maafi, Z., & M, Mamaghani (2008). Investigation greenhouse of Interaction Race two Root-Knot Nematode Meloidogyne incognita and Verticillum dahliae agent verticillium wilt Olive (Olea europaea) Seedlings in Gorgan. Journal of Agricultural Sciences and Natural Resources, 15(4), 163–178. (In Farsi with English summary). Hussey, R, S., & Barker, K. R. (1973). A comparison of methods of collecting inocula of Meloidogyne spp. including a new technique. Plant Disease Reporter, 57, 1025–1028. Ibrahim, I. K. A., Rezk, M. A., & Khalil, H. A. A. (1982). Effects of Meloidogyne incognita and Fusarium oxysporum f. sp. vasinfectum on plant growth and mineral content of cooton, Gossypum barbadense. Nematologica, 28, 298–302. Kamali-Sarvestani, S., Mostowfizadeh-Ghalamfarsa, R., Salmaninezhad, F., & Cacciola, S.O. (2022). Fusarium and Neocosmospora species associated with rot of Cactaceae and other succulent plants. Journal of Fungi, 8(4), 364. Kassie, Y. G. (2019). Status of Root-Knot Nematode (Meloidogyne species) and Fusarium wilt (Fusarium oxysporum) disease complex on tomato (Solanum lycopersicum L.) in the central rift valley, Ethiopia. Agricultural Sciences, 10(8), 1090–1103. Khan, W. (1993). Nematode Interactions. Chapman & Hall, London. 377 pp. Krejzar V., Mertelík J., Pánková I., Kloudová K., & Kůdela V. (2008). Pseudomonas marginalis associated with soft rot of Zantedeschia spp. Plant Protection Science, 44, 85–90. Vahedi Hafshejani M., & Fadaei Tehrani A. A. (2014). Interaction of root-knot nematode (Meloidogyne javanica) and bacterial agent of common scab (Streptomyces scabies) on potato. Plant Protection (Scientific Journal of Agriculture), 37(3), 49–59. Leslie, J. F., & Summerell B. A. (2006). The Fusarium Laboratory Manual. Blackwell Publishing Asia, USA. 399 pp. Mahboubi, Z., Olia, M., & Sharifnabi, B. (2017). Investigation on the interaction between Meloidogyne javanica and Verticillium dahliae on tomato. Iranian Journal of Plant Pathology, 53(4), 371–383 (In Farsi with English summary). Lombard, L., VanderMerwe, N. A., Groenewald, J. Z., & Crous, P. W. (2015). Generic concepts in Nectriaceae. Studies in Mycology, 80, 189–245. Maghsoudi, A., Ghahremani Nejad Myanji, E., & Moslehi, S. (2018). Report of begonia plant as a new host for Meloidogyne arenaria from Iran. 23rd Iranian Plant Protection Congress, 27-30 August, Gorgan University of Agricultural Sciences and Natural Resources, Gorgan, Iran. 793–794. Montazeri, P., Alizadeh, A., Shirzad A., & Salimi F. (2019). The first report of anthracnose Spathiphyllum caused by Colletotrichum gloeosporioides sensu stricto in Iran. 4th Iranian Mycological Congress, 26-28 August, Sari Agricultural Sciences and Natural Resources University, Iran. 63. Moslehi, S. (2015). Molecular and traditional screening of some wild species, landraces and commercial cultivars of tomato against Meloidogyne javanica and evaluation of the silencing of nematode 16D10 gene using RNAi technology. Ph.D. thesis, University of Tabriz. 130 pp. (In Farsi with English summary). Nordmeyer, D., & Sikora R. A. (1983). Studies on the interaction between Heterodera daverti, Fusarium avenaceum and F. oxysporum on Trifolium subterraneum. Revue de Nematologie, 6, 193–198. Perry, R., Moens, M., & Starr, J. (2009). Root Knot Nematodes. CAB International. England. Rahman, M. L., Haware, M. P., Sharma, S. B., & Mian, I. H. (2000). Interaction of Meloidogyne javanica and three root infecting fungi on Cicer arietinum. International Journal of Nematology, 2(10), 229–233. Saeedizadeh, A., Kheiri, A., Okhowat, S. M., & Hosseini Nejad, S. A. (2006). Study of growth of annual seedlings of yellow olive cultivar in the presence of Meloidogyne javanica and Verticillium dahliae. Iranian Journal of Agricultural Sciences, 37(5), 793–800. (In Farsi with English summary). Sahebani, N., Sharifi-Tehrani, A., Kheiri, A., & Mohammadi, M. (2006). Study of the changes in total phenol content in tomato (Lycopersici esculentum) roots cv. Roma VF during the interaction between root knot nematode (Meloidogyne javanica), and the causal agent of vascular wilt of tomato Fusarium oxysporum f. sp. lycopersici. Iranian Journal of Agricultural Sciences, 37(4), 745–753. (In Farsi with English summary). Schultz, F. J., & Morehart, A. L. (1981). Studies on the interaction of Pratylenchus penetrans and Verticillium albo-atrum on yellow poplar roots. Phytopathology, 71, 770–775. Shariatzadeh, M. (2016). Cultivation of flowers and ornamental plants. Excellence Publishing, 150 pp. (In Farsi). Taylor, A. L., & Sasser, J. N. (1978). Biology, identification and control of root-knot nematodes (Meloidogyne species). North Carolina State University Graphics, Raleigh NC, USA. 111 pp. Thomas, C., & Rajotte, E. G. (2005). Greenhouse IPM with an Emphasis on Biocontrols. PennState, Pennsylvania. 109 pp. Veloso, J. S., Camara M. P. S., & Sauza, R. M. (2021). Guava decline: updating its etiology from ‘Fusarium solani’ to Neocosmospora falciformis. European Journal of Plant Pathology, 159, 455–460. Zhang Y., Li, S., Li H., Wang, R., Zhang, K. Q., & Xu, J. (2020). Fungi-nematode interactions: diversity, ecology, and biocontrol prospects in agriculture. Journal of Fungi, 6(4), 206. © 2024 by the authors. Licensee SCU, Ahvaz, Iran. This article is an open access article distributed under the terms and conditions of the Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International (CC BY-NC 4.0 license) (http://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/.
| ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 352 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 244 |