
تعداد نشریات | 31 |
تعداد شمارهها | 1,032 |
تعداد مقالات | 9,139 |
تعداد مشاهده مقاله | 10,475,399 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 8,645,464 |
بهینهسازی شرایط کشت درون شیشهای گیاه هاورتیا شیشهای (Haworthia cooperi) | ||
تولیدات گیاهی | ||
مقاله 5، دوره 45، شماره 1، خرداد 1401، صفحه 53-66 اصل مقاله (2.47 M) | ||
نوع مقاله: علمی پژوهشی - باغبانی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22055/ppd.2021.36744.1971 | ||
نویسندگان | ||
سیده مهدیه خرازی1؛ مریم مرادیان2؛ نسیم صفری3؛ آزاده خادم4؛ احمد شریفی* 1 | ||
1استادیار، گروه پژوهشی بیوتکنولوژی گیاهان زینتی، پژوهشکده بیوتکنولوژی صنعتی، جهاد دانشگاهی خراسان رضوی، مشهد، ایران | ||
2مربی، گروه پژوهشی بیوتکنولوژی گیاهان زینتی، پژوهشکده بیوتکنولوژی صنعتی، جهاد دانشگاهی خراسان رضوی، مشهد، ایران | ||
3دانشجوی دکتری علوم باغبانی، گروه علوم باغبانی و فضای سبز، دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد، مشهد، ایران | ||
4مربی، گروه پژوهشی بیوتکنولوژی گیاهان زینتی، پژوهشکده بیوتکنولوژی صنعتی، جهاد دانشگاهی خراسان رضوی، مشهد، ایران | ||
چکیده | ||
این پژوهش به منظور بررسی پاسخ رشدی گیاه هاورتیا شیشهای (Haworthia cooperi) به شرایط کشت درون شیشهای در قالب 3 آزمایش جداگانه، بصورت فاکتوریل بر پایه طرح کاملا تصادفی با سه تکرار در سال 1398 در آزمایشگاه تحقیقاتی گروه بیوتکنولوژی گیاهان زینتی جهاد دانشگاهی خراسان رضوی انجام شد. در آزمایش اول اثرات نوع سیتوکنین (BA و KIN) و غلظت سیتوکنین (صفر، 1، 2 و 3 میلیگرم در لیتر) بر باززایی ریزنمونه برگ مورد ارزیابی قرار گرفت. طی آزمایش دوم به بررسی اثرات نوع نمک محیط کشت (MS و B5) و غلظت نمک محیط کشت (5/0 و 1) بر میزان پرآوری گیاهچهها پرداخته شد. در آزمایش سوم، میزان ریشهزایی گیاهچهها تحت تأثیر نوع اکسین (NAA، IBA و IAA) و غلظت اکسین (صفر، 5/0، 1 و 5/1 میلیگرم در لیتر) مورد ارزیابی قرار گرفت. نتایج نشان داد که کاربرد انواع مختلف سیتوکینین بر میزان باززایی مؤثر بود. بیشترین تعداد گیاهچه باززاشده در محیط کشت پایه MS حاوی 3 میلیگرم بر لیتر BA به همراه 5/0 میلیگرم بر لیتر NAA مشاهده شد. استفاده از محیطکشت MS در مقایسه با محیط کشت B5 کارایی بهتری را نشان داد. نتایج مرحله ریشه زایی نشان داد که وجود هورمون NAA در محیط کشت افزایش ریشهزایی در گیاه را سبب شد، در مقابل به افزایش ضخامت ریشههای تولیدی در گیاهچه نیز منجر شد که این ریشهها برای رشد گیاه در مرحله سازگاری مناسب نیستند. لذا با در نظر گرفتن تعداد و طول ریشه های تولید شده، محیط کشت بهینه جهت ریشهزایی، محیط کشت نصف غلظت MS حاوی 1 میلیگرم در لیتر هورمون IAA معرفی گردید. | ||
کلیدواژهها | ||
باززایی؛ پرآوری؛ ریشهزایی؛ کالوسزایی | ||
مراجع | ||
Asgharzadeh, R., Moradi, H., Nematzadeh, Gh., & Ghanbari, A. (2016). Evaluation of growth adapter effect on callus induction of Momordica Charantia L. Eco-Phytochemical Journal of Medical Plants, 3(15), 46-56. [In Farsi] Balapor, Z., Hosseini Moghaddam, H., Zarei, M., & Mollashahi, M. (2020). Micro Propagation of Penta Rootstock (Prunus domestica) in the Two Culture Media (MS and B5). Plant Productions, 42(4), 441-454. [In Farsi] Balch, P. M., & Figuaroa, C. A. (2002). In vitro propagation of Pelecyphora aselliformis and P. strobiliformis (cactaceae). In Vitro Cellular and Developmental Biology Plant, 38, 73-78. Cecilia Juarez, M., & Bernardo Passere C. (2002). In vitro propagation of opuntia ellisiana Griff. And a acclimatization ellisiana Griff. and acclimatization to field conditions. Biocell, 26(3), 1-18. Chien-Ying, K., Al-Abdulkarim, A.M., Al-Jowid, S.M., & Al-Baiz, A. (2009). An effective disinfection protocol for plant regeneration from shoot tip cultures of strawberry. African Journal of Biotechnology, 8(11), 2611-2615. Darang, M., Hamidoghli, Y., & Ramezani Sayad, A. (2011). Influence of growth regulators on in vitro propagation of cactus (Opuntia ficus-indica). MSc thesis of Horticultural Science, University of Guilan, Rasht. [In Farsi] De Oliveira, S.A., Pires, F., Da Silva Machado, M., Jose Prioli, A., & Mangolin C. A. (1995). In vitro propagation of Cereus peruvianus Mill. (Cactaceae), In Vitro Cellular & Developmental Biology-Plant, 31(1), 47-50. Drew, R.A., & Azimi, M. (2000). Micropropagation of Red Pitaya (Hylocereus undatus). Acta HortiCulture, 575(26), 93-98. Emara, H. (2008). Factors affecting propagation of strawberry (Fragaria spp.) through tissue cultures. International Journal of Product Development, 13(1), 191-212. Estrada-Luna, A.A., Martinez-Hernandez, J.J., Estela Torres, M., & Chable-Moreno, F. (2008). In vitro micropropagation of the prickly pear cactus Opuntia lanigera Salm- Dyck and effects of sprayed GA3 after transplantation to ex vitro conditions. Scientia Horticulturae, 117(4), 378-385. Fathi, Gh., Esmailpour, B., & Jalilvand, P. (2012). Plant growth regulators, Mashhad, JDM press. [In Farsi] Ghasemi Ghohsare, M., & Kafi, M. (2010). Floriculture Vol 2. Tehran: Tehran University Press. [In Farsi] Giusti, P., Vitti, D., Fiocchetti, F., Colla, G., Saccardo, F., & Tucci, M. (2002). In Vitro propagation of three endangered cactus species. Scientia Horticulturae, 95(4), 319-332. Huang, S. H., Xiao, H. Y., & Hong, Y. P. (2014). Tissue culture and rapid propagation of Haworthia cymbiformis. Journal of Fujian Normal University (Natural Science Edition), 30(5), 96-100. Karimi, N., Naderi, R., Ebrahimi, M., & Mofid, M.R. (2010). Investigation of a Medicinal and ornamental plant propagation: The Cereus Peruvianus Mill. and using tissue culture technique. Journal of Medicinal Plants, 9(2-34), 38-44. [In Farsi] Kaul, K., & Sabharwal, P. S. (1992). Morphogenetic studies on Haworthia: Establishment of tissue culture and control of differentiation. American Journal of Botany, 59(4), 377-385. khalafalla, M. M., Abdellatef, E., Mohamed Ahmed, M. M., & Osman, M. G. (2007). Micropropagation of cactus (Opuntia ficus-indica) as strategic tool to combat desertification in arid and semi-arid regions. International Journal of Sustainable Crop Production, 2(4), 1-8. Kharrazi, M., Sharifi, A., Keykhah Akhar, F., Bagheri, A., & Moradian, M. (2018). Effect of Hormonal Compositions on Micropropagation of Fifteen Cultivars of Gerbera (Gerbera Jamesonii Bolus ex Hooker f.). Plant Productions, 40(4), 91-102. [In Farsi] Kim, D. H., Kang, K. W., & Sivanesan, I. (2017). Micropropagation of Haworthia retusa duval. Propagation of Ornamental Plants, 17(3), 77-82. Koohi, L., Zare, N., Asghari Zakaria, R., & Sheykhzade Mosadegh, P. (2014). The Effect of plant growth regulators and different explants on the response of tissue culture and cell suspension cultures of german chamomile (Matricaria Chamomilla L.). Journal of Crop Ecophysiology (Agriculture Science), 2(30), 203-214. [In Farsi] Kuykendall, L. D., Stockett, T. M., & Saunders, J. W. (2003). Rhizobium radiobacter conjugation and callus-independent shoot regeneration used to introduce the cercosporin export gene cfp from Cercospora into sugar beet (Beta vulgaris L.). Biotechnology Letter, 25(9), 739-744. Liu, B., Fang, H., Meng, C., Chen, M., Chai, Q., Zhang, K., & Liu, S. (2017). Establishment of a Rapid and Efficient Micropropagation System for Succulent Plant Haworthia turgida Haw. Hort Science, 52(9), 1278-1282. Luliana vidican, T., & Cachita-Cosma, D. (2010). Initiation of Opuntia fragilis var. fragilis in vitro cultures. Studia Universitatis Vasile Goldis, Seria stiintele Vietii, 20(3), 35-40. Mashayekhi, K., & Akbarpour, V. (2008). Mineral and organic minerals used in plant tissue culture (Vol 1). Golestan: Makhtoomgholi Feraghi press (Sarli). [In Farsi] Meftahizade, H., Moradkhani, H., Naseri, B., Lotfi, M., & Naseri, A. (2010). Improved in vitro culture and micropropagation of different Melissa officinalis L. genotypes. Journal of Medicinal Plants Research, 4(3), 240-246. Mycock, D.J., Watt, M.P., Hannweg, K.F., Naicker, K., Makwareka, M., & Berjak, P. (1997). Somatic embryogenesis of two indigenous South African Haworthia spp. (H. limifolia and H. koelmaniorum), South African Journal of Botany, 63(6), 345-350. Nagarathan, K. C., Prakash, H. S., & Shetty, H. S. (1991). Genotypic effects on the callus formation from different explants of pearl millet B lines. Advances in Plant Sciences, 4(1), 82-86. Nezamdoost, M., Kalateh Jari, S., & Ebrahimi, A. (2019). Investigation of Haworthia minima organogenesis and rooting under in vitro condition. Presented at the Conference 2nd international & 6th national confrence on organic and conventional agriculture, 25-26 Aug, University of Mohaghegh Ardabili, Ardabil. [In Farsi] Nourafcan, H., Sefidkon, F., Mousavi, A., Sharifi, M., & Khalighi, A. (2014). Effects of different medium on some morpho-physiological index of lemon verbena under in vitro conditions. Journal of Herbal Drugs, 5(3), 143-150. Nourafkan, H., & Ansari, F. (2017). The effect of MS and B5 media on growth indices of lemon verbena in in vitro condition. Iranian Journal of Horticultural Science, 48(1), 249-254. [In Farsi] Omidi, M., Ydollahi, A., Ahmadi, N., & Beyranvand, F. (2017). Improvement of in vitro micro propagation of Rosa damascene. Iranian Journal of Horticultural Science, 47(4), 773-784. Pierik, R. L. M. (1997). In Vitro culture of higher plants. Netherlands, Springer science & business media. Ruvalcaba-Ruiz, D., Rojas-Bravo D., & Valencia-Botin, A. J. (2010). In Vitro propagation of Coryphantha retusa (Britton and Rose) an endemic and endangered cactus. Tropical and Subtropical Agroecosystems, 12(1), 139-143. Sagastume Tecnoregion, H. (2006). Propagation in vitro cactus cabeza (pilocereus maxonii). Biotecnologia, 23-24. Sivanesan, I., Song, J. Y., Hwang, S. J., & Jeong, B. R. (2011). Micropropagation of Cotoneaster wilsonii Nakai-a rare endemic ornamental plant. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 105(1), 55-63. Taji, A. M., Dodd, W. A., & Williams, R. R. (1997). Plant tissue culture practice. Armidale, Australia: University of New England press. Talebi, M., Etesam, F., Sayed-Tabatabaei, B., & Khaksar, G. (2012). Direct regeneration of Periwinkle (Catharanthus roseus) via node explants culture and different combinations of plant growth regulators. Journal of Science and Technology of Greenhouse Culture Soilless Culture Research Center, 3(2), 55-65. [In Farsi] Tripathi, L., & Tripathi, J. N. (2003). Role of biotechnology in medicinal plants. Tropical Journal of Pharmaceutical Research, 2(2), 243-253. Van Jaarsveld, E. (1999). Indigenous succulent plants for indoors. Veld Flora, 85(2), 82-84. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 744 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 392 |