
تعداد نشریات | 31 |
تعداد شمارهها | 1,032 |
تعداد مقالات | 9,144 |
تعداد مشاهده مقاله | 10,484,305 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 8,649,808 |
کارایی ریزغدهزایی سه رقم سیبزمینی (Solanum tuberosum L.) تحت تنش اسمزی در شرایط درون شیشهای | ||
تولیدات گیاهی | ||
مقاله 9، دوره 45، شماره 1، خرداد 1401، صفحه 109-122 اصل مقاله (2.47 M) | ||
نوع مقاله: علمی پژوهشی - زراعت | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22055/ppd.2020.30032.1782 | ||
نویسندگان | ||
بنفشه جمشیدی1؛ مرضیه قنبری جهرمی* 2؛ امیر موسوی3 | ||
1دانشجوی کارشناسی ارشد علوم باغبانی، گروه علوم باغبانی و زراعی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران | ||
2استادیار، گروه علوم باغبانی و زراعی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران | ||
3دانشیار، پژوهشگاه ملی مهندسی ژنتیک و زیست فناوری، تهران، ایران | ||
چکیده | ||
تحقیق حاضر به منظور بررسی کارایی ریزغدهزایی سه رقم سیبزمینی (Solanum tuberosum L.) تحت تنش اسمزی در شرایط درونشیشه صورت گرفت. این آزمایش در سال 1397 در قالب طرح کامل تصادفی بهصورت فاکتوریل (دو فاکتور رقم و مواد اسمتیک) با سه تکرار در مجتمع آزمایشگاهی زکریای رازی دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات تهران انجام شد. بذر سه رقم سیبزمینی (آگریا، ساوالان، HPS-II/67) در محیط MS کشت شدند که پس از پرآوری گیاهچهها به محیطهای حاوی نه تیمار ایجادکننده تنش اسمتیک شامل پلیاتیلنگلیکول در چهار غلظت (003/0، 006/0، 009/0 و 012/0 مولار) و سوربیتول در چهار غلظت (1/0، 2/0، 3/0 و 4/0 مولار) و یک محیط بدون عامل اسمتیک (شاهد) منتقل شدند. بر اساس نتایج بهدستآمده گیاهچههای رشد یافته در شرایط غیرتنش (شاهد) نسبت به گیاهچههای تحت تیمار تنش از نظر صفات تعداد برگ، طول نوشاخه و ضریب پرآوری از مقادیر بالاتری برخوردار بودند. رقم آگریا نسبت به بقیه ارقام در شرایط تنش ویژگیهای رشدی بهتری نشان داد. بالاترین درصد خشکیدگی بهترتیب در تیمار 012/0 مولار پلیاتیلنگلیکول در رقم ساوالان و تیمار 4/0 مولار سوربیتول در هر سه رقم مشاهده شد. درصد ریزغدهزایی در هر سه رقم با ایجاد تنش جزیی (003/0 مولار پلیاتیلنگلیکول) نسبت به شاهد تا حدودی افزایش و در سطوح بالاتر تنش این صفت کاهش پیدا کرد. بیشترین درصد ریزغدهزایی (66/58) در رقم آگریا و غلظت 003/0 مولار پلیاتیلنگلیکول بهدستآمد. میزان تولید پرولین، آنزیم کاتالاز و سوپراکسیددیسموتاز (SOD) با ایجاد تنش نسبت به شاهد افزایش یافت. همچنین، میزان کلروفیل کل با ایجاد تنش نسبت به شاهد کاهش پیدا کرد. بهطورکلی بر اساس نتایج بهدستآمده بیشترین میزان ریزغدهزایی بهترتیب در ارقام آگریا (66/58 درصد) و HPS-II/67 (66/53 درصد) و بیشترین وزن ریزغده (96/0 گرم) در رقم HPS-II/67 مشاهده شد. بر اساس نتایج، تنش اسمزی ملایم در افزایش ریزغدهزایی در گیاه سیبزمینی موثر واقع شد، بنابراین پلیاتیلن گلیکول در غلظت 003/0 مولار میتواند در تکثیر تجاری این گیاه مورد استفاده قرار گیرد. | ||
کلیدواژهها | ||
تنش خشکی؛ پلیاتیلنگلیکول؛ ریزافزایی؛ سوربیتول | ||
مراجع | ||
Aebi, H. (1983). Catalase. In H. Bergmeyer (Ed). Methods of enzymatic analysis (PP. 273-277). Weinheim, NewYork: Verlag Chemie/Academic Press Inc. Alasdon, A., Knutson, K. W., & Wilkinson, J. C. (1988). Relationship between microtuber and minitubers production and yield characteristics of six potato cultivars. American Potato Journal, 65(8), 468. Amini, K. (2009). Evaluation of in vitro seedlings from seed potatoes in terms of drought tolerance. Master's thesis, Ardebil University Researcher. [In Farsi] Arnon, D. I. (1949). Copper enzymes in isolated chloroplast. Polyphenol oxide in Beta vulgaris. Plant Physiology, 24(1), 1-15. Bagheri, H., & Azadi, P. (2012). Plant tissue culture: Techniques and tests. Mashhad: Mashhad University Jihad Publications. [In Farsi] Bates, L. S., Waldern, R. P., & Tear, I. D. (1973). Rapid determination of free proline for water stress studies. Plant and Soil, 39, 205-207. De Paivaneto, V., & Otoni, W. C. (2003). Carbon sources and their osmotic potential in plant tissue culture does it matter?. Scientia Horticulture, 97(3-4), 193-202. Donnelly, D. J., Coleman, W. K., & Coleman, S. E. (2003). Potato microtuber production and performance: a review. American Potato Journal, 80, 103-115. Fabeiro, C., Santa Olalla, F., & de Juan, J. A. (2001). Yield and size of deficit irrigated potatoes. Agricultural Water Management, 48, 255-266. FAOSATAT. (2020). Food and Agriculture Organization of the United Nations, FAOSTAT database. FAO Statistics Division 09 December. 2020. <http://faostat.fao.org/site/383/default.aspx>. Farooq, M., Wahid, A., Kobayashi, N., Fujita, D., & Basra, S. M. A. (2009). Plant drought stress: effects, mechanisms and management. Agronomy for Sustainable Development, 29, 185-212. Gao, X., Li, Ch., Zhang, M., Wang, R., & Chen, B. (2015). Controlled release urea improved the nitrogen use efficiency, yield and quality of potato (Solanum tuberosum L.) on silt loamy soil. Field Crops Research, 181, 60-68. Giannopolitis, C., & Ries, S. (1977). Superoxide dismutase. I. Occurrence in higher plants. Plant Physiology, 59, 309-314. Gopal, J., & Iwama, K. (2007). In vitro screening of potato against water-stress mediated through sorbitol and polyethylene glycol. Plant Cell Reports, 26, 693-700. Gopal, J., & Minocha, J. L. (1998). Effectiveness of in vitro selection for agronomic characters in potato. Euphytica, 103, 67-74. Gopal, J., Minocha, J. L., & Dhaliwal, H. S. (1998). Microtuberization in potato (Solanum tuberosum L.). Plant Cell Reports, 17, 794-798. Hasandokht, M. (2012). Vegetable production technology (1st Ed1). Tehran: Tehran University Press. [In Farsi] Irna, A., & Mauromicale, G. (2006). Physiological and growth response to moderate water deficit of off-season potatoes in a Mediterranean environment. Agricultural Water Management, 82, 193-209. Jahromi, M. G., Rahnama, H., Mousavi, A., & Safarnejad, M. R. (2022). Comparative evaluation of resistance to potato virus Y (PVY) in three different RNAi-based transgenic potato plants. Transgenic Research, 31, 313-323. Jaleel, C. A., Manivannan, P., Sankar, B., Kishorekumar, A., Gopi, R., Somasundaram, R., & Panneerselvam, R. (2007). Water deficit stress mitigation by calcium chloride in Catharanthus roseus; effects on oxidative stress, proline metabolism and indole alkaloid accumulation. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces, 60, 110–116. Kubo, T., Mori, G., & Oda, M. (2005). Factors affecting the formation and growth of microtubers in Zantedeschia plantsets. Journal of Japan Society of Horticultural Science, 74, 47-50. Lentini, Z., & Earle, E. D. (1991). In vitro tuberization of potato clones from different maturity groups. Plant Cell Reports, 9, 691-695. Masoudi-Sadaghiani, F., Abdollahi Mandoulakani, B., Zardoshti, M. R., Rasouli- Sadaghiani, M. H., & Tavakoli, A. (2011). Response of proline, soluble sugars, photosynthetic pigments and antioxidant enzymes in potato (Solanum tuberosum L.) to different irrigation regimes in greenhouse condition. Australian Journal of Crop Science, 5(1), 55-60. Matlabi, A., Kazemiani, S., Akbari, N. (2015). Effect of osmotic pressure on in vitro microtuberization of potato cv. agria in different concentrations of sucrose and PEG. Agricultural Biotechnology Journal, 7(2), 171-184. Najafzadeh Asl, S., & Ehsan Pour, A. A. (2012). Effect of drought stress on some physiological indices of two potato cultivars (Concord, Kenebec) under in vitro culture conditions. Two Quarterly Scientific Articles of Boom, 2(1), 70-82. Passioura, J. B. (2007). The drought environment: physical, biological and agricultural perspectives. Journal of Experimental Botany, 58(2), 113-117. Platt, H. W. (1992a). Cultivar response to fusarium storage rot as affected by two methods of seed origin propagation; clonal selections and in vitro culture. American Journal of Potato Research, 69, 179-186. Platt, H. W. (1992b). Potato cultivar response to late blight as affected by clonal selections and in vitro culture. American Journal of Potato Research, 69, 187-193. Prins, A. H., & Verkaar, H. J. (1992). Defoliation: Do physiological and morphological responses lead to (over) compensation? In: Ayres, P.G. (Ed.), Pests and Pathogens. Plant Responses to Foliar Attack (p. 13-21). Oxford, UK: Bios Scientific Publishers. Ranalli, P., Ruaro, B. J., Delre, P., Dicandilo, M., & Mandilino, G. (1994). Microtuber and minitubers production and field performance compared with normal tubers. Potato Research, 37, 383-391. Serraj, R., & Sinclair, T. R. (2002). Osmolyte accumulation, it really help increase crop yield under drought conditions. Plant, Cell and Environment, 25, 333-341. Shahpiri, A., Omidi, M., Ahmadi Tehrani, P., & Davoudi, D. (2004). Study of tissue culture and diversity of Somaclon in potatoes. Iranian Journal of Agricultural Science, 35(2), 323-335. [In Farsi] Shajari, A., & Hasan Panah, D. (2014). Evaluation of dehydration tolerance in potato cultivars under laboratory conditions. 1st National Conference on Medicinal Plants, Traditional Medicine and Organic Agriculture. [8 November 8 2013]. Hamedan, Hegmatan Environmental Center Assessors Center, Arya Hegmataneh Development Center, Shahid Muftah College of Hamedan. Shock, C. C., Shock, B. M., & Welch, T. (2013). Strategies for efficient irrigation water use. Corvallis, Oregon, United States: Oregon State University. P. 1-7. Solmon-Blackburn, R. M., & Baker, H. (2001). Breeding resistance virus potatoes (Solanum tuberosum L.) a review of traditional and molecular approaches. Heridity, 86, 17-35. Tofang Saz poor, R., Roshanfekr, H., Meskarbashee, M., Bromand Nasab, S. (2015). Effect of irrigation deficit and cultivation method on some quantitative and qualitative characteristics of potato cultivars. Plant Productions, 38(2), 1-12. [In Farsi] Trehan, S. P., & Singh, B. P. (2013). Nutrient efficiency of different crop species and potato varieties – in retrospect and prospect. Potato Journal, 40(1), 1-21. Woolf, J. (1986). Potato in the diet. CIP public. pp 7-9. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 804 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 417 |