
تعداد نشریات | 31 |
تعداد شمارهها | 1,030 |
تعداد مقالات | 9,108 |
تعداد مشاهده مقاله | 10,312,174 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 8,544,421 |
الگوی پروتئوم برگ درخت توت آمریکایی (Maclura pomifera) در پاسخ به تنش خشکی | ||
تولیدات گیاهی | ||
مقاله 5، دوره 44، شماره 2، شهریور 1400، صفحه 211-220 اصل مقاله (922.25 K) | ||
نوع مقاله: علمی - پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22055/ppd.2019.30310.1791 | ||
نویسندگان | ||
علیرضا خالقی* 1؛ روح انگیز نادری2؛ سید علیرضا سلامی3؛ مصباح بابالار2؛ النا مزرتی4 | ||
1استادیار، گروه علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه اراک، اراک، ایران | ||
2استاد، گروه علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران | ||
3استادیار، گروه علوم باغبانی، دانشکده کشاورزی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران | ||
4محقق گروه پروتئومیکس مؤسسه CNR فلورانس، ایتالیا | ||
چکیده | ||
چکیده شوری و قلیائیت خاکها اثرات مخربی بر 932 میلیون هکتار از زمینهای جهان دارد. همچنین سبب کاهش تولید محصول در 100 میلیون هکتار از زمینهای قاره آسیا شده است. این تحقیق به منظور ارزیابی اثرات متقابل منابع نیتروژن و سطوح بیکربنات سدیم بر خصوصیات رشدی، فیزیولوژیکی و پارامترهای فلورسانس کلروفیل دو ژنوتیپ سفید و بنفش سیر در گلخانه هیدروپونیک، دانشکده کشاورزی، دانشگاه ولیعصر (عج) رفسنجان در سال 1395 انجام شد. آزمایش بهصورت فاکتوریل و در قالب طرح کاملاً تصادفی با سه فاکتور بیکربنات سدیم در سه سطح (صفر، 10 و 20 میلیمولار)، نیتروژن در سه سطح (سولفات آمونیوم، نیترات آمونیوم و نیترات کلسیم با غلظت پنج میلیمولار نیتروژن) و دو ژنوتیپ سیر (سفید و بنفش) با 3 تکرار انجام شد. نتایج نشان داد که کاربرد منابع نیترات آمونیوم و سولفات آمونیوم اثر منفی بیکربنات را بر وزن تر و خشک اندام هوایی و وزن تر و خشک ریشه کاهش داد. گیاهان تغذیهشده با سولفات آمونیوم بیشترین مقدار قند محلول در هر دو ژنوتیپ سیر (4/1 و 32/1 میلیگرم برگرم وزن تر برگ بهترتیب در ژنوتیپ سفید و بنفش) را به خود اختصاص دادند. میزان پرولین با افزایش غلظت بیکربنات سدیم در هر دو ژنوتیپ سیر افزایش یافت. بیشترین مقدار رنگیزههای فتوسنتزی تحت تأثیر بیکربنات در گیاهانی مشاهده شد که با نیترات آمونیوم و سولفات آمونیوم تغذیه شده بودند. منابع نیتروژن، بیکربنات سدیم و برهمکنش آنها بر شاخصهای فلورسانس کلروفیل تأثیری نداشت و تنها اثر ژنوتیپ بر این صفت معنیدار شد. در مجموع، کاربرد سولفات آمونیوم و نیترات آمونیوم سبب بهبود خصوصیات رشدی و عملکردی ژنوتیپهای سیر در شرایط تنش قلیائیت شد. براساس یافتههای این مقاله میتوان به این نکته اشاره کرد که با تغییر در محلولهای غذایی موردنیاز گیاهان در شرایط تنش میتوان از میزان خسارت به آنها کاست و از این تغییر سبب بهبود خصوصیات رشدی و عملکردی گیاهان در شرایط تنش شد. | ||
کلیدواژهها | ||
آنتی اکسیدانتهای آنزیمی؛ پروتئینهای شوک حرارتی؛ لیپوکسیژناز | ||
مراجع | ||
References Bonhomme, L., Monclus, R., Vincent, D., Carpin, S., Lomenech, A. M., Plomion, C., Brignolas, F., & Morabito, D. (2009). Leaf proteome analysis of eight Populus×euramericana genotypes: genetic variation in drought response and in water-use efficiency involves photosynthesis-related proteins. Proteomics, 9(17), 4121-4142. Bonsager, B. C., Finnie, C., Roepstorff, P., & Svensson, B. (2007). Spatio-temporal changes in germination and radicle elongation of barley seeds tracked by proteome analysis of dissected embryo, aleurone layer, and endosperm tissues. Proteomics, 7(24), 4528-4540. Bradford, M. M. (1976). A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry, 72(1-2), 248-54. Dubey, H., & Grover, A. (2001). Current initiatives in proteomics research: The plant perspective. Current Science, 80(2), 262-269. Echevarria-Zomeno, S., Ariza, D., Jorge, I., Lenz C., Jorrin, J., & Navarro, R. (2009). Changes in the protein profile of Quercus ilex leaves in response to drought stress and recovery. Plant Physiology, 166(3), 233-245. Gill, S. S., & Tuteja, N. (2010). Reactive oxygen species and antioxidant machinery in abiotic stress tolerance in crop plants. Plant Physiology and Biochemistry, 48(12), 909-930. Hajheidari, M., Abdollahian-Noghabi, M., & Askari, H. (2005). Proteome analysis of sugar beet leaves under drought stress. Proteomics, 5(4), 950-60. Hazen, S. P., Pathan, M. S., Sanchez, A., Baxter, I., Dunn, M., Estes, B., Chang, H. S., Zhu, T., Kreps, J. A., & Nguyen, H. T. (2005). Expression profiling of rice segregating for drought tolerance QTLs using a rice genome array. Functional and Integrative Genomics, 5(2), 104-116. IPCC. (2007). Executive summary of the intergovernmental panel on climate change. Retrieved from http/www.ipcc.com.ch. Koyro, H., Ahmad, P., & Geissler, N. (2012). Abiotic stress responses in plants: an overview. In Ahmad, P., & Prasad, M.N.V. (Eds.), Environmental adaptations and stress tolerance of plants in the era of climate change (pp.1-28). NY: Springer. Li, Y., Ye, W., Wang, M., & Yan, X. (2009). Climate change and drought: a risk assessment of crop-yield impacts. Climate research, 39(1), 31-46. Saremirad, A., & Mostafavi, K. (2020). Genetic diversity study of Sunflower (Helianthus annus L.) genotypes for agro-morphological traits under normal and drought stress conditions. Plant Productions, 43(2), 227-240. [In Farsi] Shafiei, N., Khaleghi, E., & Noorollah Moallemi, M. (2019). Effect of salicylic acid on some morphological and biochemical characteristics of Olive (Olea europaea cv. ‘Konservalia’) under water stress. Plant Productions, 42(1), 15-30. [In Farsi] Sidow, J. N. (1991). Plant lipoxygenase: structure and function. Annual Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology, 42(1), 145-188. Sofo, A., Dichio, B., Xiloyannis, C., & Masia, A. (2004). Effects of different irradiance levels on some antioxidant enzymes and on malondialdehyde content during rewatering in olive tree. Plant Science, 166(2), 293-302. Ushimaru, T., Nakagawa, T., Fujioka, Y., Daicho, K., Naito, M., Yamauchi, Y., Nonaka, H., Amako, K., Yamawaki, K., & Murata, N. (2006). Transgenic Arabidopsis plants expressing the rice dehydroascorbate reductase gene are resistant to salt stress. Plant Physiology, 163(11), 1179-1184. Vasquez-Robinet, C., Mane, S. P., Ulanov, A. V., Watkinson, J. I., Stromberg, V. K., De Koeyer, D., Schafleitner, R., Willmot, D. B., Bonierbale, M., Bohnert, H. J., & Grene R. (2008). Physiological and molecular adaptations to drought in Andean potato genotypes. Experimental Botany, 59 (8), 2109-2123. Wang, W., Scali, M., Vignani, R., Spadafora, A., Sensi, E., Mazzuca, S., & Cresti, M. (2003a). Protein extraction for two-dimensional electrophoresis from olive leaf, a plant tissue containing high levels of interfering compounds. Electrophoresis, 24(14), 2369-2375. Wang, W., Vinocur, B., & Altman, A. (2003b). Plant responses to drought, salinity and extreme temperatures: towards genetic engineering for stress tolerance. Planta, 218(1), 1–14. Wang, W., Vinocur, B., Shoseyov, O., & Altman, A. (2004). A: Role of plant heatshock proteins and molecular chaperones in the abiotic stress response. Trends in Plant Science, 9)5), 244-252. Xia, L., Björnstedt, M., Nordman, T., Eriksson, L. C., & Olsson, J. M. (2001). Reduction of ubiquinone by lipoamide dehydrogenase. An antioxidant regenerating pathway. European Journal of Biochemistry, 268 (5), 1486-90. Xiao, X., Yang, F., Zhang, S., Korpelainen, H., & Li, C. (2009). Physiological and proteomic responses of two contrasting Populus cathayana populations to drought stress. Physiologia Plantarum, 136(2), 150-168. Yan, S., Tang, Z., & Su, w. (2005). Proteomic analysis of salt stress- responsive proteins in rice root. Proteomics, 5(2), 235-244.
© 2021 Shahid Chamran University of Ahvaz, Ahvaz, Iran. This article is an open access article distributed under the terms and conditions of the Creative Commons Attribution 4.0 International (CC BY 4.0 license) (http://creativecommons.org/licenses/by/4.0/). | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 858 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 379 |