
تعداد نشریات | 31 |
تعداد شمارهها | 1,030 |
تعداد مقالات | 9,098 |
تعداد مشاهده مقاله | 10,338,454 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 8,571,236 |
بررسی بیان ژنهای پیننسنتاز و لینالولسنتاز در پاسخ به تیمار جیبرلیک اسید در گیاه بومادران (Achillea millefolium L.) | ||
تولیدات گیاهی | ||
مقاله 2، دوره 43، شماره 1، خرداد 1399، صفحه 13-24 اصل مقاله (455.14 K) | ||
نوع مقاله: علمی - پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22055/ppd.2019.27042.1652 | ||
نویسندگان | ||
امید پور عسکری1؛ داریوش نباتی احمدی* 2؛ خسرو مهدی خانلو3؛ لیلا نژاد صادقی3 | ||
1دانشجوی کارشناسی ارشد مهندسی تولید و ژنتیک گیاهی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران | ||
2دانشیار، گروه مهندسی تولید و ژنتیک گیاهی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران | ||
3استادیار، گروه مهندسی تولید و ژنتیک گیاهی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران | ||
چکیده | ||
چکیده اخیراً توجه روزافزونی به گیاهان دارویی و متابولیتهای ثانویه میشود. بومادران (Achillea millefolium L.) یک گیاه دارویی است که دارای ترکیبات مهمی از جمله پینن و لینالول میباشد. این دو ترکیب به سبب اهمیت بالایی که دارند، زمینهساز توجه محققان به خود شدند. در این تحقیق میزان بیان رونوشت دو ژن کدکننده پیننسینتاز و لینالولسینتاز را که در انتهای مسیر مونوترپنی MEP قرار دارند و سبب تولید پینن و لینالول میشوند، با اعمال برونزاد تیمار جیبرلیکاسید (GA3( با سه سطح غلظتی (صفر، 25، 50 میلیگرم) در زمانهای مختلف نمونهبرداری (24، 48 و 72 ساعت پس از اعمال تیمار)، سال 1396-1395 در گلخانه دانشکده کشاورزی مورد بررسی قرار گرفتند. نتایج واکنش زنجیره پلیمرزدر زمان واقعی نشان دادکه بیشترین میزان رونوشت در اعمال تیمار جیبرلیک اسید با غلظت 25 میلیگرم و زمان نمونهبرداری 48 ساعت پس از اعمال تیمار، مربوط به ژن پیننسینتاز بود. در بیشتر نمونهها، با افزایش میزان رونوشت پیننسینتاز، میزان رونوشت لینالولسینتاز کاهش مییافت. شواهد حاکی از آن است که، کاربرد برونزاد جیبرلیکاسید، باعث ایجاد فرآیند مولکولی شده که منتج به پاسخدهی گیاه با تغییر بیان ژنهای کدکننده پیننسنتاز و لینالولسینتاز می شود. | ||
کلیدواژهها | ||
زمان؛ ژنهای کدکننده؛ میزان رونوشت؛ واکنش زنجیره پلیمرز در زمان واقعی | ||
مراجع | ||
References Afkar, S. Karimzadeh, Gh. Jalali, M. Sharifi, M. and Behmanesh, M. (2013). Influence of methyljasmonate on menthol production and gene expression in peppermint (Mentha x piperita L.). Journal of Medicinal Plants and By-Products, 2(1), 75-82. Aharoni, A., Jongsma, M. A. and Bouwmeester, H. J. (2005). Volatile science? Metabolic engineering of terpenoids in plants. Trends in Plant Science, 10(12), 594-602. Baydar, H. and Baydar, N. G. (2005). The effects of harvest date, fermentation duration and Tween 20 treatment on essential oil content and composition of industrial oil rose (Rosa damascene Mill). Industrial Crops and Products, 21(2), 251-255. Benedek, B. and Kopp, B. (2007). Achillea millefolium L. revisited: Recent findings confirm the traditional use. Wiener Medizinische Wochenschrift, 157(13-14), 312-314. Bohlmann, J. and Keeling, C. I. (2008). Terpenoid biomaterials. The Plant Journal, 54(4), 656-669. Bohlmann, J., Steele, C. L. and Croteau, R. (1997). Monoterpene synthases from grand fir (Abies grandis). cDNA isolation, characterization and functional expression of myrcene synthase, (−)-(4S)-limonene Bustin, S. A. (2000). Absolute quantification of mRNA using real-time reverse transcription polymerase chain reaction assays. Journal of Molecular Endocrinology, 25(2), 169-193. Cordoba, E., Salmi, M. and Leo, P. (2009). Unravelling the regulatory mechanisms that modulate the MEP pathway in higher plants. Journal of Experimental Botany, 60(10), 2933-2943. Deschamps, C. and Simon, J. E. (2006). Terpenoid essential oil metabolism in basil (Ocimum basilicum L.) following elicitation. Essential Oil Research, 18, 618-621. Dixon, R. A. and Paiva, N. L. (1995). Stress-induced phenyl propanoid metabolism. Plant Cell, 7(7), 1085-1097. Dudareva, N., Pichersky, E. and Gershenzon, J. (2004). Biochemistry of plant volatiles. Plant Physiology, 135(4), 1893-1902. Ghani, A. and M. Azizi. (2010). The effect of different drying methods on quantity and quality characteristics of five yarrow species (achillea). Plant Productions, 32(1) 1-11. [In Farsi] Hassani, L., Abdollahi Mandoulakani, B., Darvishzadeh, R. and Hassani, A. (2016). Increasing the expression of genes chavicol o-methyl teransferase and cinnamate 4-hydroxilase under methyl jasmonate treatment in medicinal plant basil (Ocimum basilicum L.).Scientic Journal of Agriculture, 39(3) 101-112. Hayashi, H., Huang, P. and Inoue, K. (2003). Up-regulation of soyasponin biosynthesis by methyl jasmonate in cultured cells of Glycyrrhiza glabra. Plant Cell Physiology, 44(4), 404-411. Javedan Asl, M., Rajabi Memari, H., Nabati Ahmadi, D. and Rahnama, A. (2015a). Comparison the different methods of genomic RNA extraction from the medicinal plant of yarrow (Achillea millefolium). Plant Productions, 39(2), 105-114. [In Farsi] Javedan Asl, M., Rajabi Memari, H., Nabati Ahmadi, D. and Rahnama Ghahfarokhi, A. (2015b). Isolation of linalool synthase and pinene synthase genes from yarrow (Achillea millefolium L.) medicinal plant. Plant Genetic Report, 2(1), 23-349. [In Farsi] Kim, H. J., Chen, F., Wang, X. and Rajapakse, N. C. (2006). Effect of methyl jasmonate on secondary metabolit of Sweet Basil (Ocimum basilicum L.). Journal of Agricultural and Food Chemistry, 54(6), 2327-2332. Liu, S., Zhou, L., Yu, S., Xie, C., Liu, F. and Song, Z. (2013). Polymerization of α-pinene using Lewis acidic ionic liquid as catalyst for production of terpene resin. Biomass and Bioenergy, 57, 238-242. Mehdi Khanlou, K. and Van Bockstaele, E. (2012). A critique of widely used normalization software tools and an alternative method to identify reliable reference genes in red clover (Trifolium pratense L.). Planta, 236(5), 1381-1393. Nicot, N., Hausman, J. F., Hoffmann, L. and Evers, D. (2005). Housekeeping gene selection for real-time RT-PCR normalization in potato during biotic and abiotic stress. Journal of Experimental Botany, 56, 2907-2914. Paulsen, E. (2002). Contact sensitization from Compositae-containing herbal remedies and cosmetics. Contact Dermatitis, 47(4), 189-198. Pfaffl, M. (2001). A new mathematical for relative quantification in realtime RT-PCR. Nucleic Acids Research, 29(9), 1-6. Pfaffl, M. W., Horgan, G. W. and Dempfle, L. (2002). Relative expression software tool (REST©) for group-wise comparison and statistical analysis of relative expression results in real-time PCR. Nucleic Acids Research, 30(9), 1-10. Pooraskari, O., Nabati Ahmadi, D., Mehdi Khanlou, K. and Nejadsadeghi, L. (2018). The comparison of Rahimmalek, M., Tabatabaei, B. E. S., Etemadi, N., Goli, S. A. H., Arzani, A. and Zeinali, H. (2009). Essential oil variation among and within six Achillea species transferred from different ecological regions in Iran to the field conditions. Industrial Crops and Products, 29(2-3), 348-355. Schmiderer, C., Grausgruber-Groger, S., Grassi, P., Steinborn, R. and Novak, J. (2010). Influence of gibberellin and daminozide on the expression of terpene synthases and on monoterpenes in common sage (Salvia officinalis). Journal of Plant Physiology, 167(10), 779-786. Schmittgen, T. D. and Livak, K. J. (2008). Analyzing real-time PCR data by the comparative CT method. Nature Protocols, 3(6), 1101-1108. Soleymani, F. and Taheri, H., (2017). Relative expression of genes of menthol biosynthesis pathway in peppermint (Mentha piperita L.) after chitosan, gibberellic acid and methyl jasmonate treatments. Russian Journal of Plant Physiology, 64(1), 59-66. Suzuki, H., Srinivasa Reddy, M. S., Naoumkina, M., Aziz, N., May, G. D., Huhman, D. V., Sumner, L. W., Blount, J. W., Mendes, P. and Dion, R. A. (2005). Methyl jasmonate and yeast elicitor induce differential transcriptional and metabolic reprogramming in cell suspension cultures of the model legume.Medicago truncatula Planta, 220(5), 696-707. Wang, R. Y. and Ghabrial, S. A. (2002). Effect of aphid behavior on efficiency of transmission of Soybean mosaic virus by the soybean-colonizing aphid, Aphis glycines. Plant Disease, 86(11), 1260-1264. Yu, Z. X., Li, J. X., Yang, C. Q., Hu, W. L., Wang, L. J. and Chen, X. Y. (2012). The jasmonate-responsive AP2/ERF transcription factors AaERF1 and AaERF2 positively regulate artemisinin biosynthesis in Artemisia annua L. Molecular Plant, 5(2), 353-365.
© 2020 by the authors. Licensee SCU, Ahvaz, Iran. This article is an open access article distributed under the terms and conditions of the Creative Commons Attribution-Non Commercial 4.0 International (CC BY-NC 4.0 license) (http://creativecommons.org/licenses/by-nc/4.0/) | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 736 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 556 |