
تعداد نشریات | 31 |
تعداد شمارهها | 1,031 |
تعداد مقالات | 9,109 |
تعداد مشاهده مقاله | 10,355,031 |
تعداد دریافت فایل اصل مقاله | 8,578,204 |
تأثیر محرکهای مختلف زیستی و غیرزیستی بر رشد ریشه مویین در گیاه دارویی خشخاش (Papaver somniferum L.) | ||
تولیدات گیاهی | ||
مقاله 3، دوره 41، شماره 1، خرداد 1397، صفحه 29-42 اصل مقاله (1.16 M) | ||
نوع مقاله: علمی - پژوهشی | ||
شناسه دیجیتال (DOI): 10.22055/ppd.2018.13548 | ||
نویسندگان | ||
شیوا سیاه منصور1؛ احمد اسماعیلی* 2؛ فرهاد نظریان فیروزآبادی3 | ||
1دانشجوی کارشناس ارشد بیوتکنولوژی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه لرستان، خرمآباد، ایران | ||
2دانشیار، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکده کشاورزی، دانشگاه لرستان، خرمآباد، ایران | ||
3استاد، گروه زراعت و اصلاح نباتات، دانشکده کشاورزی، دانشگاه لرستان، خرمآباد، ایران | ||
چکیده | ||
گیاه خشخاش (Papaver somniferum L.)، از مهمترین گیاهان در صنعت دارویی جهان و منشأ تولید آلکالوئیدها میباشد. یکی از تکنیکهای تولید آلکالوئید، استفاده از کشت ریشه مویین میباشد؛ امّا در بیشتر مواقع تولید آلکالوئیدها در مقیاس تجاری کم است و برای افزایش آنها، نیاز به تحریک تولید با روشهای مختلفی از جمله استفاده از محرکهای زیستی و غیرزیستی است. در این پژوهش، به منظور افزایش زیستتوده ریشههای مویین، اثر 4 نوع محرک (سالیسیلیک اسید، نیترات نقره، سولفات مس و عصاره مخمّر) بهصورت آزمایشهای جداگانه و در قالب طرح کاملاً تصادفی با سه تکرار مورد مطالعه قرار گرفت. جهت انجام این آزمایشها، ریشههای مویین اولیه تولید شده در نهایت درون ارلنهای حاوی 30 میلیلیتر محیط کشت ½MSاضافه شدند و هر ارلن به عنوان یک تکرار در نظر گرفته شد. تأیید تراریختگی ریشههای مویین با تکثیر اختصاصی ژنهای rolC، انجام شد و باندی با اندازهای مطابق انتظار، روی ژل الکتروفورز مشاهده گردید. نتایج نشان داد که غلظت 5/0 میلیگرم در میلیلیتر از محرک عصاره مخمّر بیشترین تأثیر را بر صفات مورفولوژیکی داشت. تجزیه و تحلیل دادهها نشان داد که محرکهای زیستی، نقش مؤثرتری نسبت به تیمارهای غیرزیستی دارند و غلظتهای بالای محرکها، اعم از زیستی و غیرزیستی، بر زیستتوده ریشههای مویین، تأثیر منفی دارند. | ||
کلیدواژهها | ||
اگروباکتریوم رایزوژنز؛ تراریختگی؛ زیستتوده؛ زیستی؛ غیرزیستی | ||
مراجع | ||
Ahmadian Chashmi, N., Sharifi, M., Karimi, F. and Rahnama, H. (2010). Comparative study of tropane alkaloids production in hairy roots and plantlet cultures of (Atropa belladonna L.) by salicylic acid treatments. Iranian Journal of Plant Biology, 2(3), 63-76. [In Farsi]
Akbari, Z., Qaderi, A., Kalate-Jari, S., Mehrafarin, A. and Naghdi Badi, H. A. (2012). Changes of Trigonelline Biosynthesis under Nitrogenous Compounds in Hairy-root Culture of Iranian Fenugreek (Trigonella foenum-graecum L.). Journal of Medicinal Plants, 11(2), 128-135. [In Farsi].
Alderete, L. G. S., Talano, M. A., Ibanez, S. G., Purro, S., Agostini, E., Milrad, S. R. and Medina, M. I. (2009). Establishment of transgenic tobacco hairy roots expressing basic peroxidases and its application for phenol removal. Journal of Biotechnology, 139(4), 273-279.
Bustin, S. and Dorudi, S. (1998). Molecular assessment of tumour stage and disease recurrence using PCR-based assays. Molecular Medicine Today, 4(9), 389-396.
Echevarria-Machado, I., Escobedo-G, M. R. M. and Larque-Saavedra, A. (2007). Responses of transformed (Catharanthus roseus) roots to femtomolar concentrations of salicylic acid. Plant Physiology and Biochemistry, 45(6-7), 501-507.
Facchini, P. J. (2001). Alkaloid biosynthesis in plants: Biochemistry, cell biology, molecular regulation, and metabolic engineering applications. Annual Review of Plant Biology, 52, 29-66.
Furner, I. J. Huffman, G. A. Amasino, R. M. Garfinkel, D. J. Gordon, M. P. and Nester, E. W. (1986). An Agrobacterium transformation in the evolution of the genus Nicotiana. Nature, 319, 422-427.
Kang, S. M., Jung, H. Y., Kang, Y. M., Yun, D. J., Bahk, J. D., Yang, J. K. and Choi, M. S. (2004). Effects of methyl jasmonate and salicylic acid on the production of tropane alkaloids and the expression of PMT and H6H in adventitious root cultures of (Scopolia parviflora). Plant Science, 166(3), 745-751.
Kim, H. J., Chen, F., Wang, X. and Rajapakse, N. C. (2006). Effect of methyl jasmonate on secondary metabolites of sweet basil (Ocimum basilicum L.). Journal of Agricultural and Food Chemistry, 54(6), 2327-2332.
Lee, E., Park, S. and Paek, K. (2015). Enhancement strategies of bioactive compound production in adventitious root cultures of Nakai subjected to methyl jasmonate and salicylic acid elicitation through airlift bioreactors. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, 120(1), 1-10.
Maksymiec, W. and Krupa, Z. (2006). The effects of short-term exposition to Cd, excess Cu ions and jasmonate on oxidative stress appearing in (Arabidopsis thaliana). Environmental and Experimental Botany, 57(1-2), 187-194.
Maksymiec, W., Wianowska, D., Dawidowicz, A. L., Radkiewicz, S., Mardarowicz, M. and Krupa, Z. (2005). The level of jasmonic acid in (Arabidopsis thaliana) and (Phaseolus coccineus) plants under heavy metal stress. Journal of Plant Physiology, 162(12), 1338-1346.
Memelink, J., Verpoorte, R. and Kijne, J. W. (2001). ORC Anization of jasmonate-responsive gene expression in alkaloid metabolism. Trends in Plant Science, 6(5), 212-219.
Rahimi, S. Devi, B. Khorolragchaa, A. Kim, Y. Kim, J. Jung, S. and Yang, D. (2014). Effect of salicylic acid and yeast extract on the accumulation of jasmonic acid and sesquiterpenoids in Panax. Plant Physiology, 61(6), 811-817.
Rao, S. R. and Ravishankar, G. (2002). Plant cell cultures: chemical factories of secondary metabolites. Biotechnology Advances, 20(2), 101-153.
Richards, E., Reichardt, M. and Rogers, S. (1997). Preparation of plant DNA using CTAB. Short Protocols in Molecular Biology, 3(2), 101-111.
Savitha, B. C., Thimmaraju, R., Bhagyalakshmi, N. and Ravishankar, G. (2006). Different biotic and abiotic elicitors influence betalain production in hairy root cultures of Beta vulgaris in shake-flask and bioreactor. Process Biochemistry, 41(1), 50-60.
Shahbazi, E. and Riahi Madvar, A. (2014). Forskolin production and gene expression of 1-deoxy-D-xylulose-5-phosphate reductoisomerase in treated (Coleus forskohlii) Plant with Cu. Plant Production Technology, 6(2), 45-56. [In Farsi].
Sharp, J. M. and Doran, P. M. (2001). Strategies for enhancing monoclonal antibody accumulation in plant cell and organ cultures. Biotechnology Progress, 17(6), 979-992.
Shi, M., Kwok, K. and Wu, J. Y. (2007). Enhancement of tanshinone production in (Salvia miltiorrhiza) Bunge (red or Chinese sage) hairy‐root culture by hyperosmotic stress and yeast elicitor. Biotechnology and Applied Biochemistry, 46(4), 191-196.
Tepfer, D. (1984). Transformation of several species of higher plants by Agrobacterium rhizogenes: Sexual transmission of the transformed genotype and phenotype. Cell, 37(3), 959-967.
Tzfira, T. and Citovsky, V. (2006). Agrobacterium-mediated genetic transformation of plants: biology and biotechnology. Current opinion in Biotechnology, 17(2), 147-154.
Van Wyk, B. E. and Wink, M. (2004). Medicinal plants of the world: an illustrated scientific guide to important medicinal plants and their uses. Portland (Oregon): Timber Press.
Weid, M., Ziegler, J. and Kutchan, T. M. (2004). The roles of latex and the vascular bundle in morphine biosynthesis in the opium poppy, (Papaver somniferum). Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 101(38), 13957-13962.
Xing, B., Yang, D., Guo, W., Liang, Z., Yan, X., Zhu, Y. and Liu, Y. (2014). Ag+ as a more effective elicitor for production of tanshinones than phenolic acids in Salvia miltiorrhiza hairy roots. Molecules, 20(1), 309-324.
Yang, C., Chen, M., Zeng, L., Zhang, L., Liu, X., Lan, X., Tang, K. and Liao, Z. (2011). Improvement of tropane alkaloids production in hairy root cultures of Atropa belladonna by overexpressing pmt and h6h genes. Plant Omics Journal, 4(1), 29-33.
Zhao, D., Fu, C., Chen, Y. and Ma, F. (2004). Transformation of (Saussurea medusa) for hairy roots and jaceosidin production. Plant Cell Reports, 23(7), 468-474.
Zhu, W. and Stefano, G. (2004). Reticuline exposure to invertebrate ganglia increases endogenous morphine levels. Neuroendocrinology Letter, 25(5), 323-330. | ||
آمار تعداد مشاهده مقاله: 1,188 تعداد دریافت فایل اصل مقاله: 2,052 |